Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения различных диапазонов на метаболизм сперматозоидов быков

Авторы

  • Андрей Александрович Белов ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского», ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет имени Л.Я Флорентьева»
  • Владимир Александрович Петров ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского», ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет имени Л.Я Флорентьева»
  • Павел Сергеевич Игнатьев Производственное объединение «Уральский оптико-механический завод «имени Э.С. Яламова
  • Екатерина Сергеевна Дерюгина ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского»
  • Марина Николаевна Иващенко ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского», ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет имени Л.Я Флорентьева»
  • Анна Вячеславовна Дерюгина ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского»

DOI:

https://doi.org/10.7868/S3034519726020149

Ключевые слова:

бык, низкоинтенсивное лазерное излучение, сперматозоид, криоконсервация, свободнорадикальный процесс, каталаза, супероксиддисмутаза

Аннотация

В статье представлены результаты работы по исследованию влияния низкоинтенсивного лазерного излучения с длинами волн 650 и 830 нм при криоконсервации на свободнорадикальные процессы в сперматозоидах крупного рогатого скота. Изучали спермопродукцию черно-пестрых голштинизированных быков. Оценивали нативную разбавленную стерильной средой «BioXcell» (Франция) сперму, сперму после глубокой заморозки и сперму после глубокой заморозки, предварительно обработанную низкоинтенсивным лазерным излучением. По показателям свободнорадикального окисления сперматозоидов после криоконсервации выявлено увеличение содержания малонового диальдегида, диеновых, триеновых конъюгатов, оснований Шиффа, снижение активности каталазы и супероксиддисмутазы. Применение низкоинтенсивного лазерного излучения в качестве криопротектора привело к уменьшению содержания продуктов пероксидации и росту активности ферментов антиоксидантов. Полученные результаты свидетельствуют о положительном влиянии низкоинтенсивного лазерного излучения на показатели окислительного метаболизма сперматозоидов крупного рогатого скота.

Биографии авторов

  • Андрей Александрович Белов , ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского», ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет имени Л.Я Флорентьева»

    кандидат биологических наук

  • Владимир Александрович Петров , ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского», ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет имени Л.Я Флорентьева»

    ассистент

  • Павел Сергеевич Игнатьев , Производственное объединение «Уральский оптико-механический завод «имени Э.С. Яламова

    кандидат физико-математических наук

  • Екатерина Сергеевна Дерюгина , ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского»

    студент

  • Марина Николаевна Иващенко , ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского», ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет имени Л.Я Флорентьева»

    кандидат биологических наук

  • Анна Вячеславовна Дерюгина , ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского»

    доктор биологических наук

Библиографические ссылки

1. Арутюнян А.В., Дубинина Е.Е., Зыбина Н.Н. Методы оценки свободнорадикального окисления и антиоксидантной системы организма. СПб.: ИКФ «Фолиант», 2000. 104 с.

2. Атрощенко М.М., Калашников В.В., Брагина Е.Е., Зайцев А.М. Сравнительное изучение ультраструктуры сперматозоидов в эпидидимальной, эякулированной и криоконсервированной сперме жеребцов // Сельскохозяйственная биология. 2017. Т. 52. №2. С. 274-281. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.2.274rus.

3. Дерюгина А.В., Иващенко М.Н., Лодяной М.С. Оценка резистентности мембран сперматозоидов быков в процессе долгосрочного хранения // Естественные и технические науки. 2022. Т. 1 (164). С. 107-109.

4. Дерюгина А.В., Иващенко М.Н., Таламанова М.Н. и др. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на показатели крови коров при технологическом стрессе // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2023. №6. С. 95-99.

5. Клебанов Г.И. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на функциональный потенциал лейкоцитов // Бюл. эксп. биол. мед. 1997. Т. 123. №4. С. 395-398.

6. Миславский О.В., Алексеев Ю.В., Федоскова Т.Г. и др. Перспективы применения низкоинтенсивного лазерного излучения в иммунологии // РМЖ. 2021. №10. С. 63-68.

7. Национальная технология замораживания и использования спермы племенных быков-производителей / под ред. А.И. Абилова, Н.М. Решетниковой. М.: 2008, 160 с.

8. Никиткина Е.В., Шапиев И.Ш. и др. Использование спермы быков с низкой концентрацией и активностью сперматозоидов для криоконсервации // Достижения науки и техники АПК. 2010. №7. С. 49-51.

9. Nijs M., Creemers E., Cox A. et al. Influence of freeze-thawing on hyaluronic acid binding of human spermatozoa // Reprod Biomed Online. 2009. No.19. Р. 202–206. https://doi.org/10.1016/S1472-6483(10)60073-9.

10. Lavi R., Shainberg A., Friedmann H. et al. Low energy visible light induces reactive oxygen species generation and stimulates an increase of intracellular calcium concentration in cardiac cells // J Biol Chem. 2003. No.278 (42). Р. 40917–40922.

11. Liu H., Colavitti R., Rovira I.I., Finkel T. Redox- dependent transcriptional regulation // Circ Res. 2005. No.97 (10). Р. 967–974.

12. Gorji E., Farsi M.M., Khafri S. Analysis of the impact of cryopreservation and theophylline on motility of sperm // Middle East Fertil. Soc. J. 2017. No.23. Р. 98–102. https://doi.org/10.1016/j.mefs.2017.09.002.

13. O’Connell M., McClure N., Lewis S.E.M. The effects of cryopreservation on sperm morphology, motility and mitochondrial function // Hum. Reprod. 2002. No.17. Р. 704–709. https://doi.org/10.1093/humrep/17.3.704.

14. Said T.M., Gaglani A., Agarwal A. Implication of apoptosis in sperm cryoinjury // Reprod Biomed Online. 2010. Vol. 21. Р. 456–462. https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2010.05.011.

Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда № 25-26-00263.

Опубликован

2026-05-21

Выпуск

Раздел

ЗООТЕХНИЯ

Как цитировать

Белов , А. А. ., Петров , В. А. ., Игнатьев , П. С. ., Дерюгина , Е. С. ., Иващенко , М. Н. ., & Дерюгина , А. В. . (2026). Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения различных диапазонов на метаболизм сперматозоидов быков. Вестник российской сельскохозяйственной науки, 2, 84-88. https://doi.org/10.7868/S3034519726020149