ПРИМЕНЕНИЕ РАЗЛИЧНЫХ РЕГУЛЯТОРОВ РОСТА ПРИ КЛОНАЛЬНОМ МИКРОРАЗМНОЖЕНИИ СМОРОДИНЫ ЧЕРНОЙ (RIBES NIGRUM L.)
Аннотация
Отечественные и зарубежные ученые ведут исследования по оптимизации и разработке новых приемов микроклонального размножения смородины черной (Ribes nigrum L.). Успешность размножения зависит от сроков введения в культуру in vitro, типа эксплантов, стерилизующего агента, состава питательной среды. На приживаемость и рост эксплантов на каждом этапе размножения влияют солевой состав питательной среды, регуляторы роста, в основном цитокины и ауксины. В статье рассмотрены теоретические аспекты использования различных регуляторов роста на разных этапах клонального микроразмножения смородины черной, приведены методики микроклонального размножения, разработанные учеными ведущих научно-исследовательских организаций.
Литература
1. Альшевцева Л.И. Роль среды и регуляторов роста при микроразмножении черной смородины // Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве. Сб. научных трудов НИИ им. И.В. Мичурина. Мичуринск. 1989. С. 25-31.
2. Василейко М.В. Регуляторы роста растений и их применение в растениеводстве (литературный обзор) // Субтропическое и декоративное садоводство. 2021. №76. С. 89-99.
3. Высоцкий В.А. Клональное микроразмножение плодовых растений и декоративных кустарников // Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве. Мичуринск, 1989. С. 3-8.
4. Головина Л.А., Ишмуратова М.М. Укоренение в культуре in vitro сортов смородины черной (Ribes nigrum L.) башкирской селекции. Биомика. 2018. Т.10(4). С. 332-335. DOI: 10.31301/2221-6197.bmcs.2018- 42
5. Григорьева Л.В., Куликова Н.А., Гиченкова О.Г. Влияние регуляторов роста при микроклональном размножении смородины черной //Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса: Наука и высшее профессиональное образование. 2018. №3 (51). С. 50-55.
6. Гусева К.Ю. Использование клонального микроразмножения для получения посадочного материала смородины черной (Ribes nigrum) //Инновационные направления развития сибирского садоводства: наследие академиков М.А. Лисавенко, И.П. Калининой. 2018. С. 81-85.
7. Деменко В.И., Лебедев В.Г., Шестибратов К.А. Укоренение-ключевой этап размножения растений in vitro //Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2010. №1. С. 73-85.
8. Дерфлинг К. Гормоны растений : Систем. подход; Пер. с нем. Н.С. Гельман. М.: Мир, 1985. 303 с.
9. Ишмуратова М.М., Головина Л.А. Размножение сортов смородины черной (Ribes nigrum L.) башкирской селекции в культуре in vitro //Вестник Удмуртского университета. Серия «Биология. Науки о Земле». 2017. Т. 27. №4.
10. Князева И.В., Сорокопудов В.Н., Сорокопудова О.А. Элементы оптимизации технологии сохранения смородины черной in vitro //Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2020. №. 6 (159). С. 48-55.
11. Князева И.В., Сорокопудов В.Н., Сорокопудова О.А. Изучение последствий сохранения ягодных культур in vitro на процессы последующего клонального микроразмножения //Innоvatiоns in life sсienсes. 2020. С. 145-146.
12. Кухарчик Н.В. и др. Размножение плодовых растений в культуре in vitro. Минск: Беларуская навука. 2016. 208 с.
13. Лебедев А.А., Сковородников Д.Н. Оптимизация условий клонального микроразмножения Ribes nigrum L. (Grossulariaceae) // Разнообразие растительного мира. 2016. №1 (7). С. 61-64.
14. Леонтьева-Орлова Л.Ф. Совершенствование метода клонального микроразмножения смородины и оценка размножения в нестерильных условиях // Автореф. дисс. канд. с.-х. наук. М. 1991. 22 с.
15. Матушкин С.А., Ярмоленко Л.В. Влияние минерального состава питательной среды на ризогенез ягодных культур in vitro //Сборник научных трудов Государственного Никитского ботанического сада. 2017. №. 144-2.
16. Матушкин С.А. Влияние регуляторов роста на удлинение микропобегов сортов смородины черной //Селекция и сорторазведение садовых культур. 2020. Т. 7. №1-2.
17. Матушкина O.B., Пронина И.Н. Клональное микроразмножение плодовых и ягодных культур и перспективы его использования // Основные итоги и перспективы научных исследований ВНИИС им И.В. Мичурина: сб. науч. тр. Тамбов, 2001. Т. 2. С. 103-115 5.
18. Матушкина О.В., Пронина И.Н., Ярмоленко Л.В., Матушкин С.А. Влияние регуляторов роста на индукцию адвентивного органогенеза у листовых эксплантов плодовых и ягодных культур in vitro // Плодоводство и ягодоводство России. 2017. 48(1). С. 170-173.
19. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами. Орел, ГНУ ВНИИСПК. 2005. 51 с.
20. Райков И.А., Сковородников Д.Н., Сазонов Ф.Ф. Оптимизация размножения смородины черной в условиях in vitro // Биологизация земледелия в Нечерноземной зоне России: Сб. науч. тр. Межд. науч.-практ. конф., посвященной 30-летию Брянской ГСХА и 70-летию со дня рождения Заслуженного деятеля науки РФ, доктора с.-х. н., профессора В.Ф. Мальцева. 2010. С. 314-319.
21. Райков И.А. Совершенствование клонального микроразмножения межвидовых форм смородины черной и малины ремонтантного типа // Автореф. дис. …канд. с.-х. наук. Брянск. 2012. 19 с.
22. Сковородников Д.Н., Райков И.А. Некоторые аспекты использования цитокининов различной природы на этапе введения в культуру in vitro эксплантов черной смородины // Плодоводство и ягодоводство России. 2009. Т. XXII. №2. С. 292-296.
23. Субботина Н.С., Хорошкова Ю.В., Муратова С.А. Влияние ауксинов на ризогенез ежевики сортов Дирксен Торнлесс и Блэк Сэтин в культуре in vitro // Сб.: Научные инновации-аграрному производству: мат. Межд. науч.-практ. конф., посвященной. 2018. С. 933-938.
24. Cárdenas M. J. S. Adaptación de protocolos de establecimiento in vitro de Ribes rubrum L., Ribes nigrum L., Ribes uva-crispa L : дис. – Universidad Austral de Chile, 2016.
25. Clapa D. et al. „In vitro” propagation of black currant ‘Perla Neagra’and ‘Amurg’cultivars //Scientific Papers of the Research Institute for Fruit Growing Pitesti, Romania. 2009.
26. Dziedzic E., Jagła J. Micropropagation of Rubus and Ribes spp //Protocols for Micropropagation of Selected Economically-Important Horticultural Plants. Humana Press, Totowa, NJ, 2012. С. 149-160.
27. Kucharska D. et al. Application of meta-topolin for improving micropropagation of gooseberry (Ribes grossularia) //Scientia Horticulturae. 2020. Т. 272. С. 109529.
28. Ružić D., Lazić T. Micropropagation as means of rapid multiplication of newly developed blackberry and black currant cultivars //Agriculturae Conspectus Scientificus. 2006. Т. 71. №4. С. 149-153.
29. Sachryn I., Dziedzic E. Application of m-topolin and Led Technology for Blackcurrant Propagation in Cultures in vitro //Indian Horticulture Journal. 2018. Т. 8. №2 and 3. С. 84-86.
30. Sedlák J., Paprštein F. In vitro establishment and proliferation of red currant cultivars //Horticultural Science. 2012. Т. 39. №1. С. 21-25.
31. Vujović T., Ružić D., Cerović R. Improvement of in vitro micropropagation of black currant 'Čačanska Crna' //X International Rubus and Ribes Symposium 946. 2011. С. 123-128.
32. Zaytseva Y.G., Ambros E.V., Novikova T.I. Meta-topolin: advantages and disadvantages for in vitro propagation //Meta-topolin: A Growth Regulator for Plant Biotechnology and Agriculture; Springer: Singapore. 2021. С. 119-141.
2. Василейко М.В. Регуляторы роста растений и их применение в растениеводстве (литературный обзор) // Субтропическое и декоративное садоводство. 2021. №76. С. 89-99.
3. Высоцкий В.А. Клональное микроразмножение плодовых растений и декоративных кустарников // Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве. Мичуринск, 1989. С. 3-8.
4. Головина Л.А., Ишмуратова М.М. Укоренение в культуре in vitro сортов смородины черной (Ribes nigrum L.) башкирской селекции. Биомика. 2018. Т.10(4). С. 332-335. DOI: 10.31301/2221-6197.bmcs.2018- 42
5. Григорьева Л.В., Куликова Н.А., Гиченкова О.Г. Влияние регуляторов роста при микроклональном размножении смородины черной //Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса: Наука и высшее профессиональное образование. 2018. №3 (51). С. 50-55.
6. Гусева К.Ю. Использование клонального микроразмножения для получения посадочного материала смородины черной (Ribes nigrum) //Инновационные направления развития сибирского садоводства: наследие академиков М.А. Лисавенко, И.П. Калининой. 2018. С. 81-85.
7. Деменко В.И., Лебедев В.Г., Шестибратов К.А. Укоренение-ключевой этап размножения растений in vitro //Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2010. №1. С. 73-85.
8. Дерфлинг К. Гормоны растений : Систем. подход; Пер. с нем. Н.С. Гельман. М.: Мир, 1985. 303 с.
9. Ишмуратова М.М., Головина Л.А. Размножение сортов смородины черной (Ribes nigrum L.) башкирской селекции в культуре in vitro //Вестник Удмуртского университета. Серия «Биология. Науки о Земле». 2017. Т. 27. №4.
10. Князева И.В., Сорокопудов В.Н., Сорокопудова О.А. Элементы оптимизации технологии сохранения смородины черной in vitro //Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2020. №. 6 (159). С. 48-55.
11. Князева И.В., Сорокопудов В.Н., Сорокопудова О.А. Изучение последствий сохранения ягодных культур in vitro на процессы последующего клонального микроразмножения //Innоvatiоns in life sсienсes. 2020. С. 145-146.
12. Кухарчик Н.В. и др. Размножение плодовых растений в культуре in vitro. Минск: Беларуская навука. 2016. 208 с.
13. Лебедев А.А., Сковородников Д.Н. Оптимизация условий клонального микроразмножения Ribes nigrum L. (Grossulariaceae) // Разнообразие растительного мира. 2016. №1 (7). С. 61-64.
14. Леонтьева-Орлова Л.Ф. Совершенствование метода клонального микроразмножения смородины и оценка размножения в нестерильных условиях // Автореф. дисс. канд. с.-х. наук. М. 1991. 22 с.
15. Матушкин С.А., Ярмоленко Л.В. Влияние минерального состава питательной среды на ризогенез ягодных культур in vitro //Сборник научных трудов Государственного Никитского ботанического сада. 2017. №. 144-2.
16. Матушкин С.А. Влияние регуляторов роста на удлинение микропобегов сортов смородины черной //Селекция и сорторазведение садовых культур. 2020. Т. 7. №1-2.
17. Матушкина O.B., Пронина И.Н. Клональное микроразмножение плодовых и ягодных культур и перспективы его использования // Основные итоги и перспективы научных исследований ВНИИС им И.В. Мичурина: сб. науч. тр. Тамбов, 2001. Т. 2. С. 103-115 5.
18. Матушкина О.В., Пронина И.Н., Ярмоленко Л.В., Матушкин С.А. Влияние регуляторов роста на индукцию адвентивного органогенеза у листовых эксплантов плодовых и ягодных культур in vitro // Плодоводство и ягодоводство России. 2017. 48(1). С. 170-173.
19. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами. Орел, ГНУ ВНИИСПК. 2005. 51 с.
20. Райков И.А., Сковородников Д.Н., Сазонов Ф.Ф. Оптимизация размножения смородины черной в условиях in vitro // Биологизация земледелия в Нечерноземной зоне России: Сб. науч. тр. Межд. науч.-практ. конф., посвященной 30-летию Брянской ГСХА и 70-летию со дня рождения Заслуженного деятеля науки РФ, доктора с.-х. н., профессора В.Ф. Мальцева. 2010. С. 314-319.
21. Райков И.А. Совершенствование клонального микроразмножения межвидовых форм смородины черной и малины ремонтантного типа // Автореф. дис. …канд. с.-х. наук. Брянск. 2012. 19 с.
22. Сковородников Д.Н., Райков И.А. Некоторые аспекты использования цитокининов различной природы на этапе введения в культуру in vitro эксплантов черной смородины // Плодоводство и ягодоводство России. 2009. Т. XXII. №2. С. 292-296.
23. Субботина Н.С., Хорошкова Ю.В., Муратова С.А. Влияние ауксинов на ризогенез ежевики сортов Дирксен Торнлесс и Блэк Сэтин в культуре in vitro // Сб.: Научные инновации-аграрному производству: мат. Межд. науч.-практ. конф., посвященной. 2018. С. 933-938.
24. Cárdenas M. J. S. Adaptación de protocolos de establecimiento in vitro de Ribes rubrum L., Ribes nigrum L., Ribes uva-crispa L : дис. – Universidad Austral de Chile, 2016.
25. Clapa D. et al. „In vitro” propagation of black currant ‘Perla Neagra’and ‘Amurg’cultivars //Scientific Papers of the Research Institute for Fruit Growing Pitesti, Romania. 2009.
26. Dziedzic E., Jagła J. Micropropagation of Rubus and Ribes spp //Protocols for Micropropagation of Selected Economically-Important Horticultural Plants. Humana Press, Totowa, NJ, 2012. С. 149-160.
27. Kucharska D. et al. Application of meta-topolin for improving micropropagation of gooseberry (Ribes grossularia) //Scientia Horticulturae. 2020. Т. 272. С. 109529.
28. Ružić D., Lazić T. Micropropagation as means of rapid multiplication of newly developed blackberry and black currant cultivars //Agriculturae Conspectus Scientificus. 2006. Т. 71. №4. С. 149-153.
29. Sachryn I., Dziedzic E. Application of m-topolin and Led Technology for Blackcurrant Propagation in Cultures in vitro //Indian Horticulture Journal. 2018. Т. 8. №2 and 3. С. 84-86.
30. Sedlák J., Paprštein F. In vitro establishment and proliferation of red currant cultivars //Horticultural Science. 2012. Т. 39. №1. С. 21-25.
31. Vujović T., Ružić D., Cerović R. Improvement of in vitro micropropagation of black currant 'Čačanska Crna' //X International Rubus and Ribes Symposium 946. 2011. С. 123-128.
32. Zaytseva Y.G., Ambros E.V., Novikova T.I. Meta-topolin: advantages and disadvantages for in vitro propagation //Meta-topolin: A Growth Regulator for Plant Biotechnology and Agriculture; Springer: Singapore. 2021. С. 119-141.
Опубликован
29-04-2024
Как цитировать
ХРОМОВА, Татьяна Михайловна; ТАШМАТОВА, Лариса Владимировна; МАЦНЕВА, Ольга Владимировна.
ПРИМЕНЕНИЕ РАЗЛИЧНЫХ РЕГУЛЯТОРОВ РОСТА ПРИ КЛОНАЛЬНОМ МИКРОРАЗМНОЖЕНИИ СМОРОДИНЫ ЧЕРНОЙ (RIBES NIGRUM L.).
Вестник российской сельскохозяйственной науки, [S.l.], n. 1, p. 30-34, янв. 1970.
ISSN 2500-2082. Доступно на: <http://www.vestnik-rsn.ru/vrsn/article/view/1223>. Дата доступа: 29 апр. 2024
doi: https://doi.org/10.31857/S2500208224010071.
Выпуск
Раздел
РАСТЕНИЕВОДСТВО И СЕЛЕКЦИЯ
