ОПТИМИЗАЦИЯ ЭЛЕМЕНТОВ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ИНТРОДУЦИРОВАННЫХ СОРТОВ ЗЕМЛЯНИКИ САДОВОЙ В СИСТЕМЕ IN VITRO

О. В. Мацнева; Л. В. Ташматова; Т. М. Хромова; В. В. Шахов

doi:10.30850/vrsn/2021/4/24-27

О. В. Мацнева Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
Л. В. Ташматова, кандидат сельскохозяйственных наук Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
Т. М. Хромова, кандидат биологических наук Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур
В. В. Шахов, аспирант Всероссийский научно-исследовательский институт селекции плодовых культур

DOI: https://doi.org/10.30850/vrsn/2021/4/24-27

Аннотация

Провели исследования по оптимизации отдельных элементов микроразмножения перспективных интродуцированных сортов земляники садовой для использования в системе производства оздоровленного посадочного материала. Объекты изучения: сорта земляники зарубежной селекции Asia (Азия), Darselect (Дарселект), Siria (Сирия), Florens (Флоренс), Klery (Клери), Honeoye (Хоней), Kimberly (Кимберли). Работу провели в лаборатории биотехнологии ФГБНУ ВНИИСПК по общепринятым методикам. Оптимальный агент для обеспечения максимальной стерильности, сохранения высокой жизнеспособности и быстрой стабилизации вводимого материала земляники – 0,1% раствор сулемы. Негативное воздействие окисленных фенолов устраняли пересадкой экспланта на свежую питательную среду. Наиболее эффективным для генотипов следует считать введение в культуру in vitro при активизации ростовых процессов у розеток земляники после зимнего хранения, обеспечивающей быструю стабилизацию роста и размножения, что служит определяющим фактором интенсивного производства. Через два месяца культивирования наибольшим количеством эксплантов, способных к клонированию, характеризовались сорта земляники Азия (56,7%), Сирия (52,9), Флоренс (45,1), наименьшим – Клери (19,0%). При изоляции в фазах активного роста и его замедления способность к образованию дополнительных пазушных микропобегов была минимальной. Исключение составил сорт Азия, 33,2% эксплантов которого сформировали дополнительные микророзетки. Полученные результаты могут быть использованы для разработки систем производства оздоровленного посадочного материала интродуцированных сортов земляники садовой с помощью биотехнологических подходов.

Литература

1. Атрощенко, Г.П. Рекомендации по производству оздоровленного посадочного материала земляники/ Г.П. Атрощенко, В.В. Костицын, А.А. Наделюев// С-Пб: СПбГАУ, 2001. – 13 с.
2. Джигадло, Е.Н. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами/ Е.Н. Джигадло, М.И. Джигадло, Л.В. Голышкина. – Орел: ВНИИСПК, 2005. – 162 с.
3. Доспехов, Б.А. Методика полевого опыта/ Б.А. Доспехов. – М.: Агропромиздат, 1985. – 351 с.
4. Козлова, И.И. Сорта земляники, отвечающие современным стандартам качества/ И.И. Козлова// Плодоводство и ягодоводство России. - 2014. - Т. 38. - Ч. 1. - С. 200-207.
5. Кухарчик, Н.В. Получение посадочного материала плодовых и ягодных растений in vitro/ Н.В. Кухарчик// Наука и инновации. - 2019. - № 6 (196). - С. 17-21.
6. Матушкина, О.В. Технологические аспекты размножения земляники in vitro/ О.В. Матушкина, И.Н. Пронина// Селекция и сорторазведение садовых культур. - 2019. - Т. 6. - № 1. - С.74-77.
7. Муратова, С.А. Клональное микроразмножение растений – перспективный метод современного питомниководства/ С.А. Муратова// Мат. конф. «Пути повышения продуктивности агроценозов», Мичуринск. - 2015. - С. 367-373.
8. Bhatia, P. Improving the quality of in vitro culture shoots of tomato/ P. Bhatia, N. Achwath// Biotechnology. – 2008. – V. 7. – P. 188-193
9. Bisvas, M.K. // Multiple Shoots Regeneration of Strawberry under various color Illuminations/ M.K. Bisvas, M. Hossain, M.B. Ahmed et al.// American – Eurasian Journal of Scientific Research. - 2007. - V. 2. - P. 133-135.
10. Madumali, H.K.S. Effect of BAP and IBA on Shoot Regeneration of Strawberry (Fragaria × ananassa Duch.) through Runner Tip Culture/ H.K.S. Madumali, P.D. Abeythilakarathna, T.H. Seran// Sri Lanka Journal of Food and Agriculture. - 2019. – V. 5 (1). - P. 41-48.
11. Moradi, K. Micropropagation of strawberry by multiple shoots regeneration tissue cultures/ K. Moradi, M. Otroshy, M.R. Asimi// Journal of Agricultural Technology. - 2011. – V. 7 (6). - P. 1755-1763.
12. Munir, M. In vitro explant sterilization and bud initiation studies of four strawberry cultivars/ M. Munir, S. Igbal, I.U.D. Baloch, A.A. Khakwani // Journal of Applied Horticulture. – 2015. - V. 17(3). - P. 192-198.
13. Rattanpal, H.S. Micropropagation of strawberry through meristem culture/ H.S.Rattanpal, M.I.S.Gill, A.K. Sangwan // Acta Horticulturae. – 2011. – V. 860. - P. 149-153.