ОПРЕДЕЛЕНИЕ УСТОЙЧИВОСТИ РАСТЕНИЙ СОИ К ГЕРБИЦИДАМ НА ОСНОВЕ ИЗУЧЕНИЯ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ФЛУОРИМЕТРИИ В ЛИСТЬЯХ

Валентина Тимофеевна Синеговская; Оксана Сергеевна Душко

doi:10.31857/2500-2082/2022/4/4-8

Валентина Тимофеевна Синеговская, академик РАН, заслуженный деятель науки РФ ФНЦ «Всероссийский научно-исследовательский институт сои»
Оксана Сергеевна Душко ФНЦ «Всероссийский научно-исследовательский институт сои»

DOI: https://doi.org/10.31857/2500-2082/2022/4/4-8

Аннотация

Изучено влияние почвенного гербицида Фронтьер Оптима в дозе 1,2 л/га при его применении перед посевом и гербицидов Пивот (0,7 л/га), Пульсар (0,8 л/га), Фабиан (100 г/га) с использованием по вегетирующим растениям на интенсивность фотосинтетических процессов в фотосистеме II листьев различных сортов и форм дикой сои. Устойчивость сои к гербицидам определена показателями флуориметрии – квантовый выход фотосинтеза (Y) и квантовый выход флуоресценции (F) хлорофилла. Выявлено, что через три часа после обработки посевов сорта Гармония гербицидами квантовый выход флуоресценции по сравнению с контролем снизился на 32 %, а максимальный квантовый выход фотосинтеза увеличился на 2-8 % в зависимости от вида гербицида. Сорт Журавушка наиболее устойчив к Фронтьеру, Y при этом был самым высоким, а F - низким по сравнению с другими сортами. Растения сорта Гармония в фазе цветения в меньшей степени реагировали на обработку их гербицидом Пульсар по сравнению с Пивотом, Фабианом и Фронтьером. У скороспелых форм дикой сои с периодом вегетации до 100 дней активное усвоение квантов света фотосистемой II начиналось с фазы образования бобов, а у культурного сорта – цветения в варианте с использованием почвенного гербицида Фронтьер, что указывает на более продолжительное отрицательное влияние на растения диких форм по сравнению с культурными и подтверждает их большую чувствительность к почвенному гербициду. Используя показатели флуориметрии, можно точно и быстро в полевых условиях определять адаптивные способности сортов к воздействию гербицидов.

Литература

1. Гарькова А.Н. Сравнительная оценка влияния гербицида Гранстар на пе-рекисное окисление липидов в листьях культурного и сорного злаков // Физиология растений. 2011. № 58(6). С. 935–943.
2. Корнеев Д.Ю. Информационные возможности метода индукции флуорес-ценции хлорофилла. Киев: «Альтерпрес», 2002. 188 с.
3. Синеговская В.Т. Исследование фотосинтетических процессов сортов сои амурской селекции // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2017. № 3. С. 54–56.
4. Синеговская В.Т. Сорная растительность Амурской области и меры борь-бы с ней. Благовещенск: Приамурье, 2003. 168 с.
5. Синеговский М.О. 100 вопросов и ответов о возделывании сои (рекомен-дации для руководителей и специалистов сельскохозяйственных пред-приятий). Благовещенск: ООО «ИПК «Одеон», 2021. 79 с.
6. Фокина Е.М., Беляева Г.Н., Синеговский М.О. и др. Каталог сортов сои. Благовещенск: ООО "ИПК "ОДЕОН", 2021. 69 с.
7. Ashraf M., Harris P.J.C. Photosynthesis under stressful environments: an over-view // Photosynthetica. 2013. № 51(2). P. 163-190. doi: 10.1007/s11099-013-0021-6
8. Dayan F.E., Zaccaro M.L.M. Chlorophyll fluorescence as a marker for herbi-cide mechanisms of action // Pestic. Biochem. Physiol. 2012. № 102. P. 189-197. doi: 10.1016/j.pestbp.2012.01.005.
9. Fan J., Halpern M., Yu Y. et al. The Mechanisms Responsible for N Deficiency in Well-Watered Wheat Under Elevated CO2 // Front. Plant Sci. 2022. № 6. P.13–23. doi: 10.3389/fpls.2022.801443
10. Fayez K.A. Radwan D.E.M., Mohamed A.K. et al. Fusilade herbicide causes alterations in chloroplast ultrastructure, pigment content and physiological ac-tivities of peanut leaves // Pesticide Biochemistry and Physiology. 2004. № 78(2). P. 93-102. doi: 10.1007/s11099-014-0062-5.
11. Fehr W.R., Caviness C.E., Burmood D.T., Pennington J. Stages of develop-ment descriptions for soybeans, Glycine max. (L) Merr. Crop Sci. 1971. № 11. P. 929-930.
12. Henriques F.S. Leaf Chlorophyll Fluorescence: Background and Fundamentals for Plant Biologists // Bot. Rev. 2009. № 75. P. 249–270. doi: 10.1007/s12229-009-9035-y
13. Mahlein A.K., Kuska M.T., Behmann J. New trends of digital technologies оp-portunities for sugar beet cultivation // Int. sugarj. 2019. № 121(1442). P. 134-137.
14. Noble E., Kumar S., Görlitz F.G. et al. In vivo label-free mapping of the effect of a photosystem II inhibiting herbicide in plants using chlorophyll fluores-cence lifetime // Plant Methods. 2017. № 13. 48 p. doi: 10.1186/s13007-017-0201-7
15. Parizotto A.V., Marchiosi R., Bubna G.A. et al. Benzoxazolin-2-(3H)-one re-duces photosynthetic activity and chlorophyll fluorescence in soybean // Photo-synthetica. 2017. № 55. P. 386-390. doi: 10.1007/s11099-016-0656-1
16. Poudyal D., Rosenqvist E., Ottosen C.O. Phenotyping from lab to field-tomato lines screened for heat stress using F v / F m maintain high fruit yield during thermal stress in the field // Functional Plant Biology. 2019. № 46. P. 44-55.
17. Zargar M., Lakzian A., Rasooli R. et al. Evaluation of PRE and POST Herbi-cides on Growth Features, Nodulation, and Nitrogen Fixation of Three Culti-vars of Chickpea (Cicer aritinium L.) J. Crop Sci // Biotechnol. 2020. № 23. P. 157-162. doi: 10.1007/s12892-019-0310-0