ВВЕДЕНИЕ В СТЕРИЛЬНУЮ КУЛЬТУРУ IN VITRO ГИБРИДНЫХ СЕМЯН ОТ ОТДАЛЕННЫХ СКРЕЩИВАНИЙ CITRUS RETICULATA BLAN.VAR UNCHIU
DOI:
https://doi.org/10.7868/S3034519725060053Ключевые слова:
мандарин, гибридизация, нуцеллярные сеянцы, протокол стерилизации, стерильная культура in vitroАннотация
Селекцию с цитрусовыми культурами проводят в Федеральном исследовательском центре «Субтропический научный центр Российской академии наук» с 1994 года. В семенах от отдаленных скрещиваний Citrus reticulata Blan. var unchiu (мандарин) присутствуют нуцеллярные эмбрионы и редко слабый зиготный. Нуцеллярные сеянцы имеют большое значение в селекции цитрусовых, направленной на выведение раннеспелых сортов с высоким качеством плодов.При прорастании многозародышевых семян в условиях in situ обычно развивается один-два зародыша, остальные из-за недостатка питательных веществ погибают. В таком случае сохранить эмбрионы возможно в культуре in vitro. Гибридные семена мандарина, полученные от семи комбинаций скрещивания (C. reticulata 01 – 04 и 3252; C. reticulata Солнечный и смесь пыльцы; C. reticulata 98 – 9 и смесь пыльцы; C. reticulata 202– 5 и смесь пыльцы; C. reticulata 204 – 1 и C. medica; C. reticulata 2025 и C. limon Новозеландский; C. reticulata 99-04 и C. Medica) были введены в стерильную культуру in vitro. Цель исследования – разработка протокола стерилизации, введение в культуру in vitro семян от отдаленных комбинаций скрещивания, индукция роста нуцеллярных сеянцев. Вариант стерилизации (гель Доместос (5 мин.), 96 % этиловый спирт и обжиг плода) показал результат с большим выходом стерильной культуры – 96 %. Контаминация по вариантам была сравнительно низкой и варьировала в пределах от 4,0 до 16,7 %. Процент всхожести семян на питательной среде Мурасиге – Скуга + 6-БАП (1,0 мг/л) + мезоинозит 100 (мг/л) составил 63,1-87,2 %. Самая высокая всхожесть отмечена в комбинации C. reticulata 98 – 9 и смесь пыльцы (87,2 %). В среднем с семени было получено 3-4 полноценных, без заметных аномалий нуцеллярных сеянца.
Библиографические ссылки
1. Гвасалия М.В. Модификация питательной среды для размножения микропобегов чая (Сamellia sinensis (L.) O. Kunze) культуре in vitro // Субтропическое и декоративное садоводство. 2025. №92. С. 96–106. https://doi.org/10.31360/2225-3068-2025-92-96-107.
2. Гвасалия М.В. Клональное микроразмножение растений чая в культуре in vitro // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2015. №5. С. 36–37.
3. Кулян Р.В. Генетическое разнообразие цитрусовых растений по селекционно-значимым признакам // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2020. №3. С. 47–51. https://doi.org/10.30850/vrsn/2020/3/47-51.
4. Кулян Р.В. Хозяйственно-биологическая характеристика новых перспективных форм мандарина (Citrus reticulata Blan. var. unchiu Tan.) // Аграрный научный журнал. 2019. № 8. С. 24–28. https://doi.org/10.28983/asj.y2019i8. p. 2428.
5. Alka Jajoo In vitro propagation of citrus limonia osbeck through nucellar embryo culture // Current Research Journal of Biological Sciences. 2010. №2. V. 1. P. 6–8.
6. Grosser J.W., Gmitter F.G. Protoplast fusion for production of tetraploids and triploids: applications for scion and rootstock breeding in citrus // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2011. № 104. V. 3. P. 343–357. https://doi.org/10.1007/s11240-010-9833-2.
7. Kepiro J.L., Roose M.L. Nucellar embryony. In: Citrus Genetics, Breeding and Biotechnology (ed. I.A. Khan). 20007. CABI. https://doi.org/10.1079/9781845931934.0000.
8. Perez-Tornero O. et al. In vitro conservation of citrus germplasm // Methods in Molecular Biology. 2020. № 2122. P. 145–160. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-0342-0_11.
9. Senay Kurt, Fatma Koyuncu Characterization of Citrus and Poncirus embryo rescued hybrids as rootstock candidate using morphological markers // Horticultural Studies. 2024. Vol. 41. №3. P. 90–100. https://doi.org/10.16882/hortis.1528207.
10. Zhang X. et al. Advances in citrus breeding: from conventional techniques to biotechnological approaches // Horticulture Research. 2020. № 7. P. 115. https://doi.org/ 10.1038/s41438-020-00343-8.
